Elaborado por: Miguel Ángel Dita Rodríguez Plutarco Elías Echegoyén Ramos y Luis Fernando Pérez Vicente Se autoriza la reproducción y difusión del material contenido en este documento para los propósitos que ha sido elaborado, con fines educativos y otros no comerciales, sin previa autorización escrita del OIRSA, siempre que se especifique claramente la fuente. Este plan de contingencia tiene como objeto principal proporcionar las bases técnicas y reglamentarias para implementar los programas nacionales de contingencia y las acciones encaminadas a identificar, erradicar, contener y/o manejar adecuadamente cualquier introducción o brote de la raza 4 tropical Fusarium oxysporum f. sp. cubense (Foc R4T), agente causal de la Marchitez por Fusarium de las musáceas, que llegue a presentarse en un país de la región del OIRSA y cualquier otro país que la adopte para preparar sus sus respectivos programas. Objetivo del Plan Proporcionar las bases técnicas y de procedimientos para la implementación de acciones fitosanitarias para erradicar, contener o suprimir en forma apropiada posibles brotes de Fusarium oxysporum f. sp. cubense raza 4 tropical, en los países de la región del OIRSA. Hallazgo inicial de un evento sospechoso  El hallazgo de uno o más casos sospechosos de incursiones o brotes de Foc R4T podrá realizarlo tanto el sistema de vigilancia de plagas de la ONPF como un ente no oficial (por ejemplo, un productor, un investigador independiente, etc.). En principio, el hallazgo de cualquier planta perteneciente a variedades del subgrupo Cavendish (AAA) o a plátanos de cocción (AAB) con síntomas típicos de marchitez por Fusarium, debe ser considerado como un evento sospechoso de Foc R4T. Es recomendable elaborar un informe breve sobre este evento en el menor tiempo posible, a fin de que pueda someterse de inmediato a la ONPF, de preferencia, en un plazo no mayor de 48 horas después del hallazgo. De esta forma, la ONPF a su vez, podrá hacer los arreglos para contactar los laboratorios de diagnóstico o los expertos de ser necesario (ver apartado 2.2). Entre los datos que deberá incluir el informe sobre la detección inicial están los siguientes: a) Nombre común y científico de la plaga; b) Nombre e información de contacto del identificador del evento sospechoso y/o de la plaga; c) Nombre común y científico (si es posible) del hospedante u hospedantes en los que se encontró la plaga y el clon o variedad; d) Localización de la detección:  Nombre del campo de cultivo;   Nombre del lugar de producción;   Caserío, aldea o cantón;   Municipio, departamento o provincia,   País; y   Georreferenciación del sitio (de ser posible) y descripción de las marcas dejadas en las plantas o en el lugar; e) Fecha de detección; f) Fecha del informe; g) Institución u organización (servicio de vigilancia, centro de investigación, oficina de extensión agrícola) y persona (productor, investigador, etc.) responsable del informe de detección; h) Si fuese posible, el probable origen de la incursión de la plaga y su vía de introducción. Esta información es útil no sólo para la toma de decisiones con relación a la erradicación, sino también para identificar las debilidades en los sistemas de exclusión de la plaga que pudieron haber contribuido a la introducción de la misma y así corregirlas; i) Descripción del brote incluyendo:  posible fecha de la incursión de la plaga;  método de detección (observación de plantas con síntomas típicos de la enfermedad en hojas, pseudotallo y rizoma, diagnóstico presuntivo en laboratorio, muestreo aleatorio, etc.):  procedimiento de identificación de la plaga;  síntomas en el hospedante (incluir fotografías si es posible);  estimación de la extensión, incidencia y severidad del brote observado;   probabilidades de establecimiento y dispersión de la plaga en el lugar del brote;  estimación del área potencial de riesgo de dispersión de la plaga en el lugar del brote. j) Detalles de cualquier medida que se haya tomado en el lugar de la incursión de la plaga a la fecha del informe (tratamiento o destrucción del material hospedante, establecimiento de áreas bajo cuarentena y/o restricciones, rastreo de circunstancias anteriores y posteriores a la detección del brote). El hallazgo de un evento sospechoso es motivo para que se inicie una fase de alerta de protección fitosanitaria contra un probable brote de una plaga cuarentenaria. Estrategia y técnicas de control para una posible Erradicación-Confinamiento de Foc R4T Independientemente de la vía de introducción de Foc R4T a un área libre, es muy probable que transcurra un largo período entre la introducción y la detección, debido al período de incubación largo de esta plaga. Por esta razón, el éxito de la estrategia de erradicación – confinamiento será grandemente determinado en función de si la introducción de la plaga ha ocurrido en un solo o en pocos lugares y si se han detectado todos los brotes. Para la erradicación de un brote de Foc R4T se requiere actuar lo más pronto posible. Para ello es deseable la destrucción de las plantas infectadas que muestren síntomas que puedan tener un diagnóstico presuntivo o preliminar: esto podría incluir a otras especies hospedantes asintomáticas como las malezas presentes en el sitio del brote (ver Apéndice 4, lista de hospedantes). Para establecer las zonas de seguridad debe tenerse en cuenta la distribución de los escurrimientos superficiales y el flujo interno (dentro del suelo) de agua con posible arrastre de estructuras infectivas del patógeno. Además, deben considerarse las probabilidades de que estas estructuras infectivas hayan entrado en contacto con hospedantes cultivados, silvestres o malezas presentes en el área (para esto considerar la topografía del terreno).  Una dificultad para llevar a cabo la eliminación de plantas infectadas y de las circundantes, es que se requiere confirmación del diagnóstico de Foc R4T en el brote, para que se autorice esta acción, si es que existe legislación que lo permita. Desafortunadamente, puede no ser fácil proceder rápidamente, pues en dependencia de la infraestructura disponible, el diagnóstico confirmado con análisis moleculares en el laboratorio, podría tomar días o semanas entre la detección del brote y la obtención del resultado

IDENTIFICATION AND CHARACTERIZATION OF TWO STRAINS CAUSING HEREQUE (RALSTONIA SOLANACEARUM RACE 2) IN MUSACEAE (AAA) FROM ARAGUA STATE, VENEZUELA. Darío A. Torrealba Vargas*1 Irmarú Z. Torres Perdomo1 Maximiliano Méndez Morales2Glenda Y. Aponte Parra3 Mingrelia J. España Zarate1 José D. Rosales Rangel1Sandy L. Molina Moret1 1Profesional de Investigación, Laboratorio de Biología Molecular, Dirección de Agricultura y Soberanía Alimentaria, Fundación Instituto de Estudios Avanzados (IDEA), Carretera Hoyo De La Puerta – El Placer, Sector Sartenejas, Caracas 1080. Baruta, Venezuela.2Facultad de Agronomía, Universidad Central de Venezuela (UCV), Av. Universidad, vía El Limón. Maracay, Venezuela.3Profesional de Investigación, Unidad de Protección Vegetal Instituto Nacional de Investigaciones Agrícolas, Centro Nacional de Investigaciones Agropecuarias (INIA – CENIAP). Av. Universidad, vía El Limón, Edif. INIA, Código Postal: 2105. Maracay, Venezuela. *Correo electrónico: tdario@gmail.com Recibido: 04/09/2023 Aceptado: 02/11/2023 Publicado: RESUMEN La especie Ralstonia solanacearum (Smith) Yabuuchi, raza 2, causante del hereque o moko bacteriano en las musáceas, constituye una unidad taxonómicamente compleja que exhibe una amplia diversidad genética, fisiológica, serológica y de rango de hospedantes. Es por ello que se planteó identificar y caracterizar dos cepas (R4 y R5) seleccionadas por su patogenicidad. Para esto, se procesaron 27 muestras de 10 plantas sintomáticas de las que se obtuvieron colonias de forma irregular, elevación plana, aspecto mucoide, bordes gruesos, color crema y pigmentación central rojiza de diferentes intensidades (Fig. 1), usando medios de cultivo selectivos como el agar nutritivo y tetrazolio. Las observaciones al microscopio determinaron la presencia de colonias puras, caracterizadas como Gram Negativas con bastones rectos y curvos. Las pruebas de patogenicidad realizadas en plantas sanas, inoculadas con las dos cepas por infiltración, dieron como resultado la sintomatología característica de la enfermedad. Fig.1. características morfológicas de las colonias de Ralstonia solanacearum. Para la identificación molecular se utilizaron los iniciadores universales U1 y U2, los cuales amplificaron una banda de 996 pb que, al secuenciarla y compararla con la base de datos del GeneBank®, revelaron 80,58% de identidad y 92% de cobertura en el aislado R4, y 81,74% de identidad y 82% de cobertura para el aislado R5. Además, se utilizaron los iniciadores específicos, OLI1 y Y2 que amplificaron una banda de 288 pb lo que permitió identificar las muestras estudiadas como R. solanacearum. (Fig.2) Fig. 2. Producto de la PCR con iniciadores específicos Oli1 y Y2. Estos aislados podrán ser utilizados en distintos programas de mejoramiento para buscar tolerancia al mencionado patógeno y generar estrategias para el manejo integrado de la enfermedad. Palabras clave: inoculación, marcadores moleculares, Musa sp., Ralstonia solanacearum https://petroglifosrevistacritica.org.ve/Identificación y caracterización de dos cepas causantes del hereque (Ralstonia solanacearum raza 2) en musáceas (AAA) del estado Aragua, Venezuela – Petroglifos Revista Crítica Transdisciplinaria (petroglifosrevistacritica.org.ve)

SIGATOKA AMARILLA: Agente Causal: Mycosphaerella musicola. Al igual que la sigatoka negra, causa necrosis foliar en plantas de banano y rara vez, pero no descartable en plantas de plátano. Su incidencia y severidad se observa en el estado Aragua, donde la presión de inoculo es tan alta que logra dominar a la sigatoka negra, dadas las condiciones climáticas como altas temperaturas, precipitación cercana a 1000 mm/año y Hr cercana a 74%. Puede estar presente en la zona sur del lago como de hecho, estuvo presente antes de la llegada de la sigatoka negra, pero actualmente ha sido desplazada. PUDRICIÓN DEL PSEUDOTALLO: Agente causal: Erwinia caratovora. Se reporta por primera vez en Venezuela en 1970, en la región Sur del lago de Maracaibo. También se ha encontrado la bacteria E. chrysanthemi, produciendo en el plátano síntomas semejantes. Se ha reportado fuerte ataque en plantaciones comerciales de plátano y banano, y en topocho, ubicados en la zona sur del lago de Maracaibo y recientemente en Barinas. Su incidencia y agresividad está condicionada a factores de temperatura, humedad relativa y precipitación, a la alternancia de periodos alargados de sequía y de lluvias. CLOROSIS INFECCIOSAS DEL BANANO (CMV): Agente Causal: Cucumovirus. Dentro de este grupo de enfermedades se indica la presencia con mayor frecuencia de Clorosis infecciosa (CMV). Es el mismo que causa el mosaico común en pepino, con amplio rango de hospederos. RAYADO NEGRO DEL BANANO (BSV): Agente Causal: Badnavirus basiliforme. Se encuentra asociado con el virus baciliforme de la caña de azúcar (Lockhart, 1986). Se indica en menor cuantía, y casos aislados, la presencia del virus banana Streak Virus (BSV), en banano Cavendish y en el clon Mysore. Se corresponde con un badnavirus. Fue reportado por primera vez en el país en 1995 (Jones,1995), y hasta la fecha no se reporta con incidencia económica en los cultivos. PICUDO O GORGOJO NEGRO: Agente Causal: Cosmopolita sordidus: En los actuales momentos se encuentra ampliamente distribuido en todo el territorio nacional, atacando tanto el cultivo de plátano como banano; y la variación de la población estará en función de la edad del cultivo, condiciones del suelo entre otras. Las plantas infectadas, pierden su vigor, las hojas no se despliegan y se tornan amarilla y marchitas, produciéndose racimos pequeños, con dedos deformes, simultáneamente se ocasiona daño en el cormo, donde las raíces se debilitan facilitando la caída de las plantas, ante la presencia de lluvias o vientos. El daño es ocasionado por la larva al alimentarse dentro del rizoma o cormo, produciendo galerías, que destruyen a la vez el sistema radical de la planta. Estas galerías facilitan la entrada de otros patógenos, que aceleran el proceso de descomposición. De igual manera, el daño causado por las larvas, impiden que las yemas vegetativas se desarrollen, originando que el periodo de vida vegetal, se acorte. NEMÀTODOS: Los principales nematodos asociados al banano son Radopholus similis, Helicotylenchus multicinctus, Meloidogyne spp., y Pratylenchus spp. H. multicinctus constituye una limitante del cultivo del banano (Musa AAA) en el estado Aragua junto a Meloidogyne incognita. Quizás H. multicinctus sea la especie más difundida en este cultivo en Venezuela. Pratylenchus spp, es muy común en los estados Centro occidentales y, con relación a R. similis, a diferencia de otros países productores, las poblaciones detectadas son generalmente bajas tanto en banano como en plátano, con excepción de muestras provenientes de plátano del estado Barinas. Estudios recientes han confirmado la existencia de una asociación entre Meloidogyne sp. y Fusarium en cambur manzano (Crozzoli, 2008). PROBLEMAS DE MENOR IMPORTANCIA: MANCHA CORDANA: Agente causal: Cordana musae. Causa manchas concéntricas en plátano y banano. MANCHA O RAYADO DEL ENVES: Agente causal: Veronaea musae. Origina rayado con aspecto grasoso. MANCHA IRREGULAR OSCURA DE LA HOJA: Agente causal: Deightoniella torulosa. Incide en forma de tizon. SALPICADO DE LA HOJA O SPECKLE: Agente causal: Periconiella musae. Origina manchas pequeñas en las hojas de manera desuniforme, con aspectos de pecas. PUDRICION SECA DEL PSEUDOTALLO: Agente causal; Marasmiellus troyanus. Induce una pudrición seca en el pseudotallo. OTRAS PLAGAS: Áfidos, cortadores (gusanos), mosca Blanca, arañas rojas.

1.- Marchitez FoC R4T (Fusarium oxysporum sp. Cubense) 2.- Complejo Sigatoka ( M. Fijiensis/ M. musicola) 3.- Pudricion por Erwinia ( Erwinia sp) 4.- Moko o hereque (Ralstonia solanacearum) 5.- Marchitex por Foc R1 y R2. 6.- Virus ( Clorosis/ BSV). Enfermedad del Moko o Hereque. Causada por la bacteria Ralstonia solanacearum representa un alto riesgo fitosanitario por la alta eficiencia de diseminación y dispersión a través de diferentes mecanismos, variabilidad patogénica, difícil manejo y por ser un factor determinante en la restricción comercial de la producción de plátano (Aranda, 2016). El Moko del plátano puede destruir en un 100% las plantaciones donde se presenta (Álvarez et al., 2015). Además, es de gran importancia, debido a su amplio rango de hospedantes, fácil diseminación, alta variabilidad genética y difícil manejo (Valencia, et al., 2014). Este patógeno ingresa por las raíces y taponea los haces vasculares que impiden el libre movimiento de agua y nutrientes, afectando principalmente las hojas más jóvenes, causando un amarillamiento desde los bordes hacia la nervadura central. La bacteria puede diseminarse por heridas de la planta, aguas de escorrentía, salpicaduras, semillas infectadas, insectos, herramientas de trabajo (Hayward, 1991; Belalcázar et al., 2004; Nava, 1989, Tackatsu, 1986) La bacteria puede sobrevivir en el suelo, aguas y restos vegetales; además es de rápida diseminación, hasta el momento los controles establecidos han mostrado ser poco eficientes en su erradicación debido a la gran versatilidad del patógeno. SIGATOKA NEGRA: Agente causal: Mycosphaerella fijiensis. Causa necrosis foliar severa en las plantas, con la consecuente reducción de la actividad fotosintética y disminución de la producción y calidad del producto final. Se reporto por primera vez en 1963 en la isla Viti Levu, archi- piélago de Fiji, Pacifico Sur (sur este Asiatico), sustituyendo en importancia a la Sigatoka Amarilla. Su diseminación en América latina se inició en 1972 cuando se confirmó su presencia en Honduras, reportándose en 1991, en Venezuela (Martínez et al 2000, Martinez et al 2006). El patógeno es capaz de producir gran cantidad de ascosporas y conidios, estos últimos son muy abundantes en el envés de la hoja, pudiendo desarrollar un patrón de infección a lo largo de la nervadura principal que dificulta su control y lo hace muy costoso (Martínez et al 2000, Pérez, 1996). MAL DE PANAMA: Agente Causal: Fusarium oxysporum f. sp. Cúbense, (FOC). Al igual que la señalada anteriormente, es considerada como de gran amenaza para la industria bananera y platanera a nivel mundial, y por su naturaleza (sistémico) de ataque, es la enfermedad más temida del banano. De todas las enfermedades, el Mal de Panamá, merece especial atención, al considerar que el organismo causal, probablemente coevolucionó con el banano. Inicialmente solo dos razas de Foc fueron reconocidos (Masdek, 2003); posteriormente, fue reconocida la existencia de otras dos. La raza 1, ataca a los clones Gros Michel y Manzano, la raza 2, ataca al Bluggoe o topocho, la raza 3 a las heliconias y la raza 4 que ataca a todos estos grupos incluyendo al clon Canvendish (Stover, 1962). En Venezuela, a mediados de la década de los noventa, se observó alta incidencia en los sistemas de producción de cambur Manzano (Silk), en la zona sur del lago de Maracaibo, al punto de originar reducción significativa de la producción de este clon. Recientes estudios indican su distribución en la zona baja del estado Trujillo, en Barinas, Aragua, Monagas y Sucre, representando un peligro potencial su diseminación (Rodríguez, 2000). Qué hacer ante el FOC R4T. Tiene la categoría de plaga Cuarentenaria. Fusarium oxysporum sp. cúbense, raza 4 tropical. Causante de la enfermedad conocida como Marchitez del banano o fusariosis del banano. Afectando al grupo Cavendish, (cambures, plátanos y topochos) lo que la hace diferente a las razas 1 y 2. Contención: Lavar y desinfectar con Amonio Cuaternario (GAC) a 1.200ppm o 1,2%. Implementar los rodaluvios para vehículos, calzados y herramientas. Exclusión: Evita el ingreso de la enfermedad en otras regiones. PREVENIR EN AQUELLAS ZONAS DONDE AUN NO SE HAYA REPORTADAO LA ENFERMEDAD. Tenemos que insistir en las medidas de BIOSEGURIDAD Evitar el intercambio de material Vegetal o uso de aquellos de procedencia dudosa. Amigo Productor es importante: Erradicación – Confinamiento Supresion ­– contención. Por ahora no tenemos un control eficiente, se propone el uso de bioinsumos como Trichoderma y Bacillus, estos han mostrado resultados prometedores.  (Agrosavia 2022).

Clima cálido y una constante humedad en el aire con temperaturas entre 21 y 30°C. El frio no los favorece. El suelo debe ser profundo entre 80 y 120 cm, de texturas medias sueltas (franco arenosos a franco arcillosos, franco limosos), buen drenaje, bastante materia orgánica y muy fértiles, con un pH que va entre los 5,5 – 7.5 siendo el óptimo en 6,5.  Requiere de lluvias prolongadas y bien distribuidas y en época de verano aumentar la frecuencia de riego cada 15 – 20 dias. La altitud varia de entre los 0 msnm hasta los 1700 msnm pudiéndose adaptar hasta los 2.200 msnm. Alta velocidad del viento no lo favorece por el ancho de la lamina foliar y lo poco profundo de sus raíces. Lo ideal zonas por debajo de 20Km/hora. Propagación Vegetativa o asexual.(Cormos, cuernos, hijuelos) una vez separados de la planta madre pueden cumplir con su ciclo vegetativo. Lo más recomendable es seleccionar plantas madres vigorosas, sin signos visuales de ataques de plagas y enfermedades. Los hijos seleccionados deben ser de tipo espada, evitando el uso de aquellos conocidos como orejones o de agua, ya que han perdido su vitalidad por desequilibrio nutricional. Situación actual del cultivo. Hectáreas cosechadas para el 2021 de bananas 31.352 y plátano 52.214 para un total de 83.566 has, con una producción de 532764 y 673873 t/año respectivamente: (fuente: Coordinación de estadística en la oficina estratégica de seguimiento y evaluación de políticas públicas)

Generalidades. Los bananos y plátanos son monocotiledóneas de porte alto, originadas de cruzas intra e inter-específicas entre Musa acuminada Colla (genoma A) y Musa balbisiana Colla (genoma B) que pertenecen a la familia Musaceae. Estas especies diploides provienen de los genomas A y B, respectivamente (Simmonds y Shepherd, 1955; Sim-monds, 1962). En orden de importancia económica, existen bananos triploides (AAA, AAB y ABB), diploides (AA y AB) y tetraploides (AAAA, AAAB y AABB). Los principales cultivares comerciales son triploides, altamente estériles, partenocárpicos y propagados asexualmente (Simmonds y Shepherd, 1955; Simmonds, 1962; Ortiz y Vuylsteke, 1996). Los bananos y plátanos representan el principal alimento de al menos 400 millones de personas. Anualmente se producen 85.5 millones toneladas y alrededor de 10 % se exporta para consumirse como postre (Ortiz y Vuylsteke, 1996). La industria del banano para exportación es importante en la economía de países de América Latina y del Caribe, Asia y África (Simmonds y Shephered, 1955; Ortiz y Vuylsteke, 1996). Desde la década de los 90’s se ha intentado reforzar la investigación del cultivo, enfocada principalmente al mantenimiento de los bancos de germoplasma y al mejoramiento genético por métodos convencionales y no convencionales (Ortiz, 1995; Rout et al., 2000). Los marcadores moleculares se han utilizado para analizar la diversidad genética y en la organización e identificación de bancos de germoplasma de algunas Musáceas, y sus resultados indican que la mayoría de cultivares de banano y plátano tienen un elevado nivel de similitud genética entre cultivares de la misma especie (Grapin et al., 1998; Pillay et al., 2000; Wong et al., 2002; Ude et al., 2003). Los análisis genéticos moleculares proporcionan información precisa para clasificar taxonómicamente y determinar grupos filogenéticos, los cuales son valiosos para identificar accesiones duplicadas, así como para el registro, protección y definición de colecciones de Musáceas (Ortiz y Vuylsteke, 1996). Acorde con la dispersión geográfica, es común la práctica de conferir nombre locales a los cultivares con base en las características de la fruta y de la planta, lo que origina una confusión de sinónimos y problemas para colectar, identificar y clasificar cultivares (Ortiz y Vuylsteke, 1996; Vuylsteke et al., 1997). La clasificación morfológica de bananos y plátanos se basa principalmente en 100 características, algunas de las cuales son: altura y color del pseudotallo; naturaleza de la hoja; color, forma y posición del estigma; tipo y orientación del racimo; longitud del pedúnculo; forma, tamaño, número y curvatura de la fruta; y presencia de semillas (Simmonds y Shepherd, 1955; Swennen y Vuylsteke, 1987; IPGRI-INIBAP/CIRAD Descriptor, 1996). Pero las características morfológicas dependen de la interacción genotipo x ambiente, que las hacen inestables y variables entre años y localidades geográficas, lo cual limita su uso en la taxonomía de Musáceas (Vuylsteke et al., 1997; Ude et al., 2002). Además, las características morfológicas son usualmente determinadas por un pequeño número de genes que podrían no representar la diversidad genética total, y pueden ser engañosas para su interpretación (Staub et al., 1996; Pillay et al., 2000; Wong et al., 2002; Ude et al., 2003). Por tanto, los agrupamientos taxonómicos basados en descriptores morfológicos no podrían determinar con precisión las relaciones entre las accesiones. EL plátano es el primero en consumo diario, como acompañante del plato principal. (red Agroalimentaria de Venezuela, RedaAven, 2022). El cambur es la fruta regional de más consumo con un 70% Las grandes plantaciones de plátano Harton gigante (musa AAB) y banano (musa AAA) subgrupo Cavendish “pineo gigante”, “Williams”, “Valery” “brasilero”, y cambur Manzano (AAB) se concentran en el sur del lago de Maracaibo, estados Zulia, Merida y Trujillo. (Martínez, 2009), con un 70% de la producción nacional, encontrandose en menor escala en otros estados como Yaracuy, Apure, Monagas, Aragua, Barinas entre otros. Es un cultivo que se consigue en los patios traseros de la vivienda contribuyendo con el aporte alimenticio de los hogares Venezolanos.